实验一 α-淀粉酶活力的测定 一、实验目的1. 掌握测定α-淀粉酶活力的原理; 2. 学习并掌握测定α-淀粉酶活力的实验操作。 二、实验原理α-淀粉酶能将淀粉分子链中α-1,4葡萄糖苷键随机切断成长短不一的短链糊精、少量麦芽糖和葡萄糖,而使淀粉对碘呈蓝紫色的特异性反应逐渐消失,呈红棕色,其颜色消失的速度和酶活力有关,可通过固定反应后的吸光度计算其酶活力。 酶活力的定义:1g固体酶粉(或1mL液体酶),于60℃、pH=6.0条件,1h液化1g可溶性淀粉,即为1个酶活力单位,以u/g(u/mL)表示。 三、实验器材1. 实验材料:所购α-淀粉酶的固体酶粉 2. 试剂及溶液 (1)原碘液 称取碘(I2)11g、碘化钾(KI)22g,用少量水使碘完全溶解,然后定容至500mL,贮于棕色瓶中。 (2)稀碘液 吸取原碘液2.00mL,加碘化钾20g,用水溶解并定容至500mL,贮于棕色瓶中。 (3) 20g/L可溶性淀粉溶液 称取可溶性淀粉(以绝干计)2.000g,精确至0.001g,用水调成浆状物,在搅动下缓缓倾入70mL沸水中,然后,以30mL水分几次冲洗装淀粉的烧杯,洗液并入其中,加热至完全透明,冷却,定容至100mL,此溶液需要当天配制。 (4)磷酸缓冲液(pH=6.0) 称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)45.23g、柠檬酸(C6H8O7·H2O)8.07g,用水溶解定容至1000mL。配好后用pH计校正。 3. 仪器和设备 (1)分光光度计 应符合GB9721的有关规定 (2)恒温水浴(60±0.2)℃。 (3)秒表 (4)试管 25mm×200mm 四、实验步骤1. 待测酶液的制备 称取酶粉1~2g,精确至0.0002g(或吸取液体酶1.00mL),先用少量的磷酸缓冲液溶解,并用玻璃搅拌棒捣研,将上清液小心倾入容量瓶中,沉渣部分再加入少量缓冲液,如此捣研3~4次,最后全部移入容量瓶中,用缓冲液定容至刻度(将估计酶活力除以4,即酶活力应在3.7~5.6u/mL范围内),摇匀。通过4层纱布过滤,滤液供测定用。(此溶液需要当天配制) 2. 测定 (1) 吸取可溶性淀粉溶液20.0mL于试管中,加入缓冲液5.00mL,摇匀后,于(60±0.2)℃恒温水浴中预热5min。(小三角瓶中进行) (2)加入稀释好的待测酶液1.00mL,立即记时,摇匀,准确反应5min。 (3)立即吸取反应液1.00 mL于稀碘液5.00 mL中,摇匀,并以稀碘液作空白,于660nm波长下,用10mm比色皿,迅速测定其吸光度(A)。根据其吸光度查附表,求得测试酶液的浓度(c)。 五、实验结果1. 实验结果的计算公式: X= c ×n 式中,X――样品的酶活力(u/g,或u/mL) c――测试酶液的浓度(u/mL) n――样品的稀释倍数 所得结果表示至整数。 2. 平行试验相对误差不得超过2%。 实验二 蛋白酶活性的测定一,目的要求 学会蛋白酶活性的测定方法. 二,实验原理 蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸,在碱性条件下,将福林试剂还原,生成钼蓝与钨蓝,用分光光度法测定. 三,仪器,材料与试剂 1,苯酚试剂加水稀释1倍左右,用NaOH标定至1mol/L使用.盛在有色瓶中保存. 2,10%三氯醋酸溶液 3,0.4mol/L碳酸钠溶液:称取42.4g无水碳酸钠,用水溶解,定容至1 000mL. 4,适当pH缓冲液(供不同蛋白质使用):例如0.02mol/L,pH7.5磷酸缓冲液. 5,2%酪蛋白溶液:称取酪蛋白2g,用少量0.5mol/LNaOH溶液湿润后,用各种酶适宜的缓冲液稀释,在沸水液中加热溶解,冷却后用相应的缓冲液定容至100mL. 6,0.1%标准酪氨酸溶液:准确称取酪氨酸(预先在105°C干燥2h)0.1g,用0.2mol/L HCl溶解并定容至100mL.使用时再稀释成不同浓度. 四,实验步骤 1,将标准酪氨酸溶液配成0~100ug/mL的各种不同溶液.分别吸收1mL,各加入0.4mol/LNa2CO3溶液5mL及福林试剂1mL,置于40°C显色15min,分别测定OD680,以酪氨酸的浓度为横坐标,OD680为坐标,绘出标准曲线. 2,取酶液1mL,预热至40°C,加入预热的2%酪蛋白溶液1mL,于40°C反应10min,反应结束时加入10%三氯醋酸溶液2mL,立即摇匀,静置10min后过滤.取滤液1mL按标准曲线制作时相同的步骤,测定OD680.空白实验时,先加三氯醋酸溶液,然后再加入底物和酶液,同样测定OD680. 3,计算 在上述条件下,每分钟催化酪蛋白水解生成1mg酪氨酸的酶量定义为1个活力单位. 酶活力(单位)= OD680 x Kx n /10 式中: OD680——在680nm波长下,样品测定与空白实验的光密度差; K——常数,有标准曲线得出,数值上等于OD680为1的时候所相当的酪氨酸的毫克数; n——反应液体积; 10——反应时间为10min. 实验三、纤维素(CMC)酶活力的测定方法 一、 原理 纤维素酶在一定的温度和pH条件下,将纤维素底物(CMC,羧甲基纤维素钠)水解,释放出还原糖。在碱性、煮沸条件下,能将3,5-二硝基水杨酸中硝基还原成橙黄色的氨基化合物,其颜色的深浅与还原糖(以葡萄糖计)含量成正比。通过其在550nm测其吸光度,可得到还原糖生成量,计算出β-葡聚糖酶的酶活力。以此代表纤维素(CMC)酶的总酶活力。 酶活单位定义 在(40±0.2)℃、pH 4.2条件下,在1min内水解羧甲基纤维素钠底物,产生相当于1微克葡萄糖的还原糖的酶量,为1个酶活单位,以u/g(u/ml)表示。 二、 试剂和溶液 除非另有规定,试验中所用试剂均为分析纯,所用水为蒸馏水或去离子水。 i. 羧甲基纤维素钠(CMC-Na) 中国医药公司上海化学试剂公司产,分析纯,在25℃,2%水溶液粘度300~800厘泊尔。 ii. 磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液: 甲液:称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.2H2O )35.61 g, 用蒸馏水溶解,并定容至1000ml。 乙液:称取柠檬酸(C6H8O7.H2O)21.01 g,用蒸馏水溶解,并定容至1000ml。. 使用溶液:取甲液414ml,加乙液586ml混合均匀,用pH计校正至pH为(4.2 ±0.05),备用。 iii. 1%羧甲基纤维素钠(CMC-Na)溶液 称取1g羧甲基纤维素钠,精确至1mg,缓缓加入pH为4.2 的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液80ml,水浴加热至全部溶解。冷却后用2M HCL或NaOH调节溶液的pH到(4.2 ±0.05),搅拌均匀,定容至100ml,再用二层纱布过滤。此溶液在4oC冰箱贮存,有效期为3天。 iv. 3,5-二硝基水杨酸(DNS)试剂: 取酒石酸钾钠182g,溶于500ml蒸馏水中,加热。于热溶液中依次加入3,5-二硝基水杨酸6.3g, 氢氧化钠10g,苯酚5g,无水亚硫酸钠5g,搅拌至溶,冷却后用蒸馏水定容至1000ml,混匀,过滤,贮于棕色试剂瓶中,于暗处放置1周后使用。 :注:在黑色或棕色瓶中于室温下贮存,该试剂最多稳定6个月。 v. 1%(W/V)葡萄糖标准贮备溶液 称取预先于(103±2)℃下干燥至恒重的葡萄糖1.0000 g,用蒸馏水溶解后定容至100 ml,即为1%浓度的葡萄糖标准溶液。 D.2.5葡萄糖标准使用溶液 分别吸取1%葡萄糖标准贮备溶液1.0ml、2.0ml、3.0ml、4.0ml、 5.0ml、6.0ml置50ml容量瓶中,加蒸馏水至刻度,摇匀,制成每ml分别含葡萄糖200μg、400μg、600μg、800μg、1000μg、1200 μg的标准使用溶液。 b) 仪器和设备 除普通实验室仪器外,还应有: i. 恒温水浴锅(40±0.2) oC。 D.3.2 分光光度计 ii. 酸度计 精度±0.01pH 。 iii. 分析天平 感量0.1mg。 iv. 秒表或定时钟。 c) 测定步骤 i. 标准曲线的制作 按表D.1,分别吸取标准葡萄糖使用溶液、缓冲液和DNS试剂于各管中(每管号平平行3个样),混匀。 将标准管同时置于沸水浴中,反应7min,取出,迅速冷却至室温,准确加入蒸馏水10ml,混匀。用10mm比色杯,以空白管(对照液)调仪器零点,在分光光度计波长550nm处测吸光度。以葡萄糖量为横座标,以吸光度为纵座标,绘制标准曲线,获得线性回归方程。线性回归系数(r)应在0.9990以上时方可使用(否则须重做)。对每个新配制的DNS溶液制作新的标准曲线。 表D.1 葡萄糖标准曲线 管 号
0
1
2
3
4
5
6 ii. 样品的测定 1. 待测酶液的制备 固体酶:根据样品酶活大小,称取2g-10g固体酶样,精确至0.1mg,加入40-200ml蒸馏水,溶解后置40oC水浴浸提30min,用滤纸过滤,再根据样品酶活性大小,二次稀释至适宜浓度(使供试样液与空白液的吸光度之差落在0.2-0.4之间,下同)。液体酶:精确量取液体酶若干ml,根据样品酶活力大小,直接用蒸馏水稀释至适宜浓度,待测。 2. 操作程序 ――取三支18×180mm试管(一支空白管。二支样品管)。 ――分别向三支试管中准确加入稀释好的待测酶液0.50ml 。 ――将三支试管放入(40±0.2)oC水浴中预热5min,同时将测定底物(1%羧甲基纤维素钠溶液)置同一温度水浴中预热5min。 ――分别向二支样品管中加入1.5ml 1%羧甲基纤维素钠溶液,向空白管中加入3mlDNS试剂,准确计时,反应10min,取出。 ――迅速、准确向二支样品管中加入3ml DNS试剂,于空白管中加入1.5ml 1%羧甲基纤维素钠溶液,摇匀。将三支试管同时放入沸水浴中,待水浴中的水重新沸腾时开始准确计时,反应7min,取出,迅速冷却至室温。向三支试管中各加入10ml蒸馏水,混匀。 ――以空白管(对照液)调仪器零点,在分光光度计波长550nm下,用10mm比色杯,分别测二支样品管中样液的吸光度,取平均值。通过查标准曲线或用线性回归方程求出还原糖的含量。 d) 酶活力计算 按照下式(D.1)计算样品的纤维素CMC酶的活力: A×V×N X1= …………………………………………………(D.1) 0.5×W×10 式中: X1――――纤维素CMC酶活力,u/g ; A――――根据吸光度在标准曲线上查得(或从回归方程计算出)的还原糖生成量,μg; V――――样品提取时加入水的量(ml); N――――样品二次稀释时的稀释倍数; 0.5―――参与反应的酶量(ml); W――――样品重量(g); 10――――反应时间(min)。 e) 精密度 同一试样两次测试结果的绝对差值,不得超过算术平均值的10%。 |