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饲料—粗蛋白含量的测定—凯氏法 1 范围
本方法规定了饲料中粗蛋白含量的测定。
本方法适用于配合饲料、浓缩饲料和单一饲料。
2 引用标准
GB601 化学试剂滴定分析用标准溶液的制备
3 原理
在催化剂作用下,用硫酸破坏有机物,使含氮物转化成硫酸铵。加入强碱进行蒸馏使氨逸出,用硼酸吸收液吸收后,再用盐酸标准溶液滴定。测出氮含量,将结果乘以换算系数6.25,计算出粗蛋白的含量。
4 试剂
分析中,除另有说明外,仅使用化学纯的试剂和蒸馏水或与其纯度相当的水。
4.1 硫酸, ρ约1.84g/mL
4.2 混合催化剂
称取0.4g 硫酸铜(CuSO4·5H2O), 6g 硫酸钾或硫酸钠,磨碎混匀。
4.3 氢氧化钠溶液,400g/L
4.4 硼酸溶液,20g/L
4.5 混合指示剂溶液
甲基红乙醇溶液(1g/L),溴甲酚绿乙醇溶液(5g/L),两溶液等体积混合,在阴凉处保存期为三个月。
4.6 盐酸标准溶液,c(HCl)=0.1mol/L、0.02mol/L
4.6.1 配制c(HCl)=0.1mol/L
移取8.3mL 盐酸(分析纯),于1000mL 容量瓶中,用水稀释至刻度,混匀。此溶液为c(HCl)=0.1mol/L。
4.6.2配制c(HCl)=0.02mol/L
移取1.67mL 盐酸(分析纯),于1000mL 容量瓶中,用水稀释至刻度,混匀。此溶液为c(HCl)=0.02mol/L。
4.7 蔗糖,分析纯
4.8 硫酸铵,分析纯,干燥
4.9 硼酸吸收液
于1000mL 硼酸水溶液(10g/L)中加入10mL 溴甲酚绿乙醇溶液(1g/L),7mL 甲基红乙醇溶液(1g/L), 0.5mL 氢氧化钠水溶液(40g/L),混匀,置阴凉处保存期为一个月(全自动程序用)。
5 仪器设备
5.1 实验室用样品粉碎机或研钵
5.2 分样筛,孔径0.45mm(40 目)
5.3 分析天平,感量0.0001g
5.4 消煮炉或电炉
5.5 滴定管,酸式,10、25mL
5.6 凯氏烧瓶,250mL
5.7 凯氏蒸馏装置,常量直接蒸馏式或半微量水蒸气蒸馏式
5.8 锥形瓶,150、250mL
5.9 容量瓶,100mL
5.10 消煮管,250mL
5.11 定氮仪,以凯氏原理制造的各类型半自动,全自动蛋白质测定仪
6 试样制备
选取具有代表性的试样用四分法缩减至200g,粉碎后全部通过0.45mm(40 目筛),装于密封容器中, 防止试样成分的变化。
7 操作步骤
7.1 仲裁法
7.1.1 试样的消煮
称取试料0.5~1g(含氮量5~80mg)准确至0.0002g,放入凯氏烧瓶中,加入6.4g 混合催化剂,与试样混合均匀,再加入12mL 硫酸和2 粒玻璃珠,将凯氏烧瓶置于电炉上加热,开始小火,待样品焦化,泡沫消失后,再加强火力(360~410℃)直至呈透明的蓝绿色,然后再继续加热,至少2h。
7.1.2 氨的蒸馏
7.1.2.1 常量蒸馏法
将试料消煮液冷却,加入60~100mL 蒸馏水,摇匀,冷却。将凯氏蒸馏装置的冷凝管末端浸入装有25mL 硼酸吸收液(20g/L)和2 滴混合指示剂溶液的锥形瓶内。然后小心地向凯氏烧瓶中加入50mL 氢氧化钠溶液(400g/L),轻轻摇动凯氏烧瓶,使液溶混匀后再加热蒸馏,直至流出液体积为100mL。降下锥瓶,使冷凝管末端离开液面,继续蒸馏1~2min,并用蒸馏水冲洗冷凝管末端,洗液均需流入锥形瓶内, 然后停止蒸馏。
7.1.2.2 半微量蒸馏法将试样消煮液冷却,加入20mL 蒸馏水,转入100mL 容量瓶中,冷却后用水稀释至刻度,摇匀,做为试料分解液。将半微量蒸馏装置的冷凝管末端浸入装有20mL 硼酸吸收液(20g/L)和2 滴混合指示剂溶液的锥形瓶内。蒸汽发生器的水中应加入甲基红指示剂数滴,硫酸数滴,在蒸馏过程中保持此液为橙红色, 否则需补加硫酸。准确移取10~20mL 试料分解液注入凯氏蒸馏装置的反应室中,用少量蒸馏水冲洗进样入口,塞好入口玻璃塞,再加10mL 氢氧化钠溶液(400g/L),小心提起玻璃塞使之流入反应室,将玻璃塞
塞好,且在入口处加水密封,防止漏气。蒸馏4min,降下锥形瓶,使冷凝管末端离开吸收液面,再蒸馏1min,用蒸馏水冲洗冷凝管末端,洗液均流入锥形瓶内,然后停止蒸馏。
注:7.1.2.1 和7.1.2.2 蒸馏法测定结果相近,可任选一种。
7.1.2.3 蒸馏步骤的检验
准确称取0.2g 硫酸铵,代替试料,按7.1.2 或7.2.2 步骤进行操作,测得硫酸铵的质量分数为21.19± 0.2%,否则应检查加碱、蒸馏和滴定各步骤是否正确。
7.1.3 滴定
用7.1.2.1 或7.1.2.2 法蒸馏后的吸收液立即用盐酸标准溶液(0.1mol/L 或0.02mol/L)滴定,溶液由蓝绿色变成灰红色为终点。
7.2 推荐法
7.2.1 试样的消煮
称取0.5~1g 试料(含氮量5~80mg)准确至0.0002g,放入消化管中,加2 片消化片(仪器自备)或6.4g 混合催化剂,12mL 硫酸,于420℃下在消煮炉上消化1h。取出放凉后加入30mL 蒸馏水。
7.2.2 氨的蒸馏
采用全自动定氮仪时,按仪器本身常量程序进行测定。
采用半自动定氮仪时,将带消化液的管子插在蒸馏装置上,以25mL 硼酸溶液(20g/L)为吸收液,加入2 滴混合指示剂溶液,凯氏蒸馏装置的冷凝管末端要浸入装有吸收液的锥形瓶内,然后向消煮管中加入50mL 氢氧化钠溶液(400g/L)进行蒸馏。蒸馏时间以吸收液体积达到100mL 时为宜。降下锥形瓶,用蒸馏水冲洗冷凝管末端,洗液均需流入锥形瓶内。
7.2.3 滴定
用标准盐酸溶液(0.1mol/L)滴定吸收液,溶液由蓝绿色变成灰红色为终点。
8 空白测定
称取0.5g 蔗糖,代替试料,按第7 章进行空白测定,消耗盐酸标准溶液(0.1mol/L)的体积不得超过0.02mL。消耗盐酸标准溶液(0.02mol/L)体积不得超过0.3mL。
9 结果计算
按下式计算粗蛋白质的质量分数:
粗蛋白质(%)=0.0140×6.25×100V(V2-V1)C/MV/
式中:V2——滴定试样时所需标准酸溶液体积,mL;
V1——滴定空白时所需标准酸溶液体积,mL;
C ——盐酸标准溶液浓度,mol/L;
m ——试样质量,g;
V ——试样分解液总体积,mL;
V′——试样分解液蒸馏用体积,mL;
0.0140——与1.00mL 盐酸标准液[c(HCl)=1.000mol/L]相当的、以克表示的氮的质量。
6.25——氮换算成蛋白质的平均系数。
10 精密度
每个试样取两个平行样进行测定,以其算术平均值为结果。
当粗蛋白质含量在25%以上时,允许相对偏差为1%。
当粗蛋白质含量在10%~25%之间时,允许相对偏差为2%。
当粗蛋白质含量在10%以下时,允许相对偏差为3%。
11 参考文献
GB/T 6432-94 饲料中粗蛋白测定方法
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