甜菜碱在肉鸡体内供应甲基及节约蛋氨酸 机制的试验研究 张 民 (中国农业科学院饲料研究所精细化学品饲料添加剂研发中心,北京,100081) 摘 要 选用600只21日龄的AA肉鸡,按饲养试验要求分成3组(每组4个重复),即不添加蛋氨酸的对照组、按1200mg/kg添加蛋氨酸试验组、按600mg/kg添加甜菜碱的试验组,进行了为期21d的饲养试验。结果表明,与不添加蛋氨酸组相比,添加甜菜碱显著提高了肉鸡的日增重(P<0.01),降低了料重比(P<0.01),达到了添加蛋氨酸的效果(P<0.01)。添加甜菜碱导致了试验鸡肝脏甜菜碱-高半胱氨酸-S-甲基转移酶(BHMT)活性升高,BHMT活性比不添加蛋氨酸组和添加蛋氨酸组均显著增高(P<0.01),与不添加蛋氨酸组比,添加甜菜碱还使肝脏甲基化反应产物(游离肉碱和肌酸)的生成量明显增多(P<0.01)和胸肌中两者的存储量显著增加(P<0.01),但与添加蛋氨酸组比无明显差异(P>0.05)。这表明,甜菜碱在肝脏BHMT调控下,替代蛋氨酸为机体甲基化产物的合成提供甲基,从而产生节约蛋氨酸效应。 关键词 甜菜碱;肉鸡;BHMT;肉碱;肌酸
在19世纪60~70年代, Finkelstein[3]为首的课题组在研究人的先天性高半胱氨酸尿症时发现,在纯合日粮中,添加甜菜碱能显著提高大鼠肝脏的BHMT的活性,而增强甜菜碱转甲基与高半胱氨酸合成蛋氨酸的能力,产生降低高半胱氨酸毒性的效果。现已证实,甜菜碱是动物体内普遍存在的中间代谢物,由胆碱在肝脏黄素蛋白酶氧化下形成。此反应需VB12参与,同时受FeCl3、Co、Ni的抑制。在鸡体内胆碱只能合成少量的甜菜碱[4-6]。该课题组研究还发现,大鼠肝脏BHMT和β-CYST双重调控甜菜碱的甲基代谢[7-8]。但是,在鸡体内是否存在相同的调控机制,尚无报道。此外,有报道指出,甜菜碱是动物体内肉碱和肌酸合成的有效甲基供体,但缺乏充足的数据依据。后来,Pesti[1]和Miles[2]分别通过肉鸡饲养试验发现,甜菜碱在肉鸡体内可提供甲基并具有节约蛋氨酸的效应。本研究以AA商品代肉鸡为试验对象,探讨甜菜碱在肉鸡体内提供甲基及节约蛋氨酸的机制。 1
材料和方法 1.1
试验材料 试验产品为饲料专用甜菜碱(纯度72%,含甜菜碱盐酸盐95%)由潍坊祥维斯化学品有限公司提供。试验动物为AA肉鸡;饲粮配方和营养水平见表1。
表1
基础日粮配方及营养水平 原料名称 | 配比(%) | 营养水平 | 玉米 | 59.00 | 代谢能(MJ/kg)
12.40 | 豆粕 | 32.00 | 粗蛋白(%)
19.12 | 次粉 | 3.00 | 钙(%)
0.94 | 大豆油 | 2.00 | 总磷(%)
0.62 | 磷酸氢钙 | 1.80 | 赖氨酸(%)
1.08 | 石粉 | 1.50 | 蛋氨酸(%)
0.32 | 食盐 | 0.35 | 总含硫氨基酸(%)
0.64 | 赖氨酸 | 0.15 | | 肉鸡多维 | 0.05 | | 微量元素 | 0.20 | |
1.2
试验方法 1.2.1
饲养试验 选择600只健康AA商品代肉鸡(21日龄),预试一周,28日龄清晨空腹称重,按饲养试验要求分成3个组,每组200只(含4个重复,每个重复50只,公母各半)。在相同的基础日粮中,不添加蛋氨酸的为对照组(对照组,下同)、添加1200mg/kg蛋氨酸的试验组为蛋氨酸组(蛋氨酸组,下同) ;添加600mg/kg甜菜碱的试验组为甜菜碱组(甜菜碱组,下同)。甜菜碱分子可提供3个甲基,而蛋氨酸分子仅提供1个甲基,但据报道,甜菜碱在大鼠体内实际提供甲基的效率约是蛋氨酸的2.2倍,因此,甜菜碱组中甜菜碱的添加量为蛋氨酸添加量的1/2。在自由采食、饮水和23h、1小时黑暗光照的条件下,饲养21d(29-49日龄)。 1.2.2
样品采集和保存 饲养试验结束后,每组每个重复选体重相近的试验肉鸡8只(公母各半),共96只。在自由饮水条件下禁食12h,称重后屠宰,取同一部位肝脏和胸肌各30g,包于塑料袋中,立即放入液氮罐,然后转至-70℃冰箱保存。 1.2.3
肝脏BHMT和β-CYST 的测定 BHMT( EC2.1.1.5)的提取、纯化和测定参照Ericson(1955 ,1956)的方法[9-10];β-CYST (EC4.2.1.22)的提取、纯化和测定参照Shinbo(1983)的方法[11]。酶蛋白含量分析采用Lowry(1951)的方法,以牛血清白蛋白作标准曲[12]。 1.2.4
肝脏和肌肉中肌酸和游离肉碱的分析 肌酸的分析参照Wahlefeld(1985)酶学分析方法[13],游离肉碱的分析参照Wiehland(1985) 酶学分析方法[14]。 1.2.5
数据统计与处理 试验数据的统计分析采用SAS统计软件中的GLM过程进行,差异显著性检验采用邓肯法。 2
结果与分析 2.1 生长速度与饲料利用率 由表2中的数据可以看出,甜菜碱组比对照组肉鸡日增重提高了13.3%(P<0.01),料重比降低了12.79%(P<0.01),但采食量无显著差异(P>0.05);而与蛋氨酸组相比均无显著差异(P>0.05)。
表2 甜菜碱对肉鸡采食量、日增重和料重比的影响 项
目 | 对照组 | 蛋氨酸组 | 甜菜碱组 | 初始重(g) | 799.30±6.55 | 800.50±7.14 | 808.50±8.35 | 期末重(g) | 1991.90±12.25 | 2170.80±25.25 | 2160.70±22.54 | 日增重(g) | 56.79±0.66b | 65.25±1.12a | 64.39±0.78a | 日采食量(g) | 135.42±4.55 | 136.45 ±2.56 | 136.14 ±2.44 | 料重比 | 2.38±0.11a | 2.09±0.06b | 2.11±0.08b |
2.2
肝脏BHMT和β-CYST的活性 表3中的数据可以表明,在饲粮中添加甜菜碱显著提高了肉鸡肝脏BHMT活性,BHMT总活力和比活力较对照组分别提高了12.11%(P<0.01)和16.13%(P<0.05),较蛋氨酸组分别提高了15.69%( P<0.01)和22.03%(P<0.01),但BHMT酶蛋白含量,甜菜碱组与对照组、蛋氨酸组间均无显著差异(P>0.05) 表4中的数据显示,甜菜碱组与对照组和蛋氨酸组间,β-CYST的总活性、比活力和酶蛋白含量均无显著差异(P>0.05)。
表3
甜菜碱对肉鸡肝脏BHMT活性的影响 项目 | 对照组 | 蛋氨酸组 | 甜菜碱组 | 总活力(μ/ g) | 3.88 ±0.27b | 3.76 ±0.78b | 4.35 ±0.55a | 酶蛋白(mg/ g) | 6.62 ±0.86 | 6.58 ±0.56 | 6.67 ±6.55 | 比活力(μ/ mg) | 0.62 ±0.09b | 0.59 ±0.11b | 0.72 ±0.12a |
表4 甜菜碱对肉鸡肝脏β- CYST活性的影响 项目 | 对照组 | 蛋氨酸组 | 甜菜碱组 | 总活力(μ/g) | 2.38 ±0.08 | 2.39 ±0.11 | 2.37 ±0.14 | 酶蛋白(mg/g) | 5.84 ±0.35 | 5.82 ±0.28 | 5.64 ±0.61 | 比活力(μ/mg) | 0.41 ±0.04 | 0.42 ±0.05 | 0.43 ±0.07 |
2.3
肝脏、肌肉中肌酸和游离肉碱的含量 从表5中的数据可以看出,饲粮中添加甜菜碱和蛋氨酸均明显地促进了肉鸡肝脏甲基化产物—肌酸和游离肉碱的生成,同时增加了肌肉中肌酸和游离肉碱的含量。与对照组比,甜菜碱组肝脏中肌酸和游离肉碱含量分别提高了18.91%(P<0.01)和19.64%(P<0.01),肌肉中肌酸和游离肉碱含量分别提高了16.18%(P<0.01)和10.71%(P<0.05)。但甜菜碱组与蛋氨酸组间,肝脏、肌肉中肌酸和游离肉碱的含量均无显著差异( P>0.05)。
表5
甜菜碱对肉鸡肝脏、肌肉中肌酸和游离肉碱含量的影响 项目 | 对照组 | 蛋氨酸组 | 甜菜碱组 | 肝脏肌酸(μg/g) | 14.59 ±0.68b | 17.69 + ±1.11a | 17.35 ±2.01a | 肝脏游离肉碱(μmol/g) | 0.56 ±0.08b | 0.68 ±0.05a | 0.67 ±0.06a | 肌肉肌酸(μg/g) | 31.26 ±3.17b | 37.58 ±2.45a | 36.32 ±3.64a | 肌肉游离肉碱(μmol/g) | 1.12 ±0.13b | 1.24 ±0.06a | 1.24 ±0.08a |
3
讨论 本试验研究结果表明,在饲粮中添加600mg/kg甜菜碱明显提高了肉鸡的日增重,降低了料重比,并达到了添加甜菜碱在肉鸡体内供应甲基并节约蛋氨酸的效果,而且与添加1200mg/kg蛋氨酸的作用效果没有明显差异。但究其作用机理,目前尚未完全清楚。Finklestein 等1982 年研究了人的先天性高半胱氨酸尿症后发现,正常人体肝脏存在β-CYST,β- CYST 催化高半胱氨酸与丝氨酸合成胱硫醚,进而降解形成半胱氨酸,而先天性高半胱氨酸尿症病人缺乏此酶, 致使高半胱氨酸在体内蓄积致毒[3]。为此,他们为寻找治疗这类先天疾病的特定药物进行了研究,发现甜菜碱在肝脏BHMT的催化下,能与高半胱氨酸反应合成蛋氨酸,从而缓解了高半胱氨酸的毒性[7-8]。本研究首次用肉鸡探讨甜菜碱供甲基效应的酶活调控机制,结果显示,在缺乏蛋氨酸的日粮中,添加甜菜碱显著地提高了肉鸡肝脏BHMT的活性,与不添加蛋氨酸组比,BHMT总活力和比活力均显著提高(P<0.01);与添加蛋氨酸组比,BHMT活性增高更明显。但从肝脏β-CYST活性变化来看,添加600mg/kg甜菜碱或1200mg/ kg蛋氨酸均未有显著影响。上述结果提示,在本试验条件下,鸡体通过提高BHMT活性,增强甜菜碱转甲基与高半胱氨酸合成蛋氨酸的代谢,产生节约蛋氨酸的作用。Finklestin等(1983)还发现在大鼠肝脏甜菜碱参与高半胱氨酸→蛋氨酸→S-腺苷蛋氨酸(供活性甲基) →S-腺苷高半胱氨酸→高半胱氨酸的循环,替代蛋氨酸为机体提供甲基。在动物体内,甲基是难以合成的,必须由食物中摄取。Virtanen(1982)研究认定,甜菜碱是动物体内肌酸、肉碱等甲基化产物合成的有效甲基供体[15]。Walker(1960)研究证明,鸡体内形成肌酸的两步反应都在肝脏进行,肌肉中的肌酸来源于肝脏的合成[16]。Rebouche(1980)研究指出,肌肉组织约占机体肉碱总量的98% ,肌肉组织本身不能合成肉碱,也依赖于肝脏的合成[17]。据此,本研究就甜菜碱对鸡体的重要甲基化产物肌酸、肉碱的合成代谢做了进一步研究。结果显示,与不添加蛋氨酸对照组比,添加600mg/kg甜菜碱明显提高了肉鸡肝脏、胸肌中游离肉碱和肌酸的含量,并与添加1200mg/kg蛋氨酸组的效果基本一致。据此,在肉鸡体内甜菜碱作用机理与Finklesten 等在大鼠上的研究结果基本一致,甜菜碱替代蛋氨酸为机体甲基化产物肌酸、肉碱等的合成提供甲基,从而减少蛋氨酸的消耗,产生节约蛋氨酸的效应。
参 考 文 献 [1] Pesti , G.M. ,Sulfur amino acid and methyl donor status of corn- soy diets fed to starting broiler chicks and turkey poults [J ] .Poultry Sci. , 1979 , 58 :1541 - 1547 [2] Miles , R. D. , Ruiz, N., et al. Dietary conditions necessary for amethyl donor response in broiler and laying hens fed a corn - soybean meal diet [J ] . Poultry Sci. , 1987 , 66 :29 - 34 [3] Finkelstein , J . D. . Methionine metabolism in mammals; the biochemical basis for homocystinuria [J ] . Metabolism , 1974 , 23 :387 - 399 [4] Simmonds , S. S. , Mildred, et al. The utilization of the methylgroups of choline in the biological synthesis of methionine[J ] . J .Biol. Chem. , 1943 , 149 :519 - 525 [5] John, A.M. ,Jerard ,et al. The inability of choline to transfer amethyl group directly to homocysteine for methionine formation[J ] . J .Biol. Chem , 1950 , 182 :489 - 499 [6] Gillis , M. B. . Methylation of homocystine by chicks dificient in vitamin B12 [J ] . Proc. Soc. Exp. Biol.Med. , 1951 , 77 :13 - 15 [7] Finkelstein , J . D. ,Harins ,et al. Regulation of hepatic betaine -homocysteine methyltransferase by dietary methionine [ J ] .Biochem.Biophy. Res. Commun. , 1982 ,108 :344 - 348 [8] Finkelstein , J . D. , Martin ,et al. Betaine - homocysteine methyltransferase by dietary betaine [J ] . J . Nutr. , 1983 , 113 : 510 -521 [9] Ericson , L. E. , Wiliams ,et al. Studies on paritally purified betaine - homocysteine transmetylase of liver [J ] . J . Biol. Chem. 1956 , 219 :49 - 58 [10] Ericson , L. E. , Happer ,et al. Effects of diet on the betaine-homocysteine transmethylase activity of rat liver [ J ] . J . Biol.Chem. , 1956 , 219 :49 - 58 [11] Shinbo , H. . Cystathionine synthetase and cystathionase activities in the fat body during fifth instar larval stage of the silkworm , Bombyx mori [J ] . Insect - Biochemistry. 1983 , 13 :489- 492 [12] Lowry , O. H. , Rosebrough ,et al. Protein measurment with thefolin phend reagment [J ] . J .Biol. Chem. , 1951 , 193 :265 - 275 [13] Wahlefeld , A.W. , Siedel ,et al. Creatine and creatinine [A] .Bergmeyer H W. Methods of enzymatic analysis〔C〕. Federal Republic of Germany , Winheim:VCH Verlagsgesekkschaft mbh ,1985. 500 - 507 [14] Wieland , O. H. , Deufel , et al. Free and esterified carnitine [A] . Bergmeryer H W. Methods of enzymatic analysis [ C] .Federal Republic of Germany , Winheim: VCH Verlagsge sekkschaft mbh. 1985. 481 - 487 [15] Virtanen E. . Betaine as an effective methyl donor [J ] . Krafut2 ter. 1992 , 6 :261 - 262 [16] Walker , J .B. . Metabolic control of creatine biosynthesis:(Ⅱ)Restoration of transmidinase activity following creatine repression[J ] . J .Bioch. , 1960 , 235 :2357 - 2370 [17] Rebouche , C.J., Comparative aspects of carnitine biosynthesisin microorganisms and mammals with attention to carnitine synthesis in man [ A ] . Frenkel R A , MeGarry J D. Carnitinebiosynthesis , Metabolism and Function [ C] . New York : Aca2demic Press , 1980. 57 – 72 |